第二节　几种海洋软体动物标本的浸制

一、材料与用具

乙醚：用于麻醉杀死鱼类。

甲醛：用于固定和保存标本。

量筒：配制不同浓度的甲醛溶液。

塑料桶：用于标本固定时盛放固定液。

体长板：用于测量鱼体各部分的长度。体长板通常用塑料板划上米制方格刻度制成。也可购买塑料质地的坐标纸，钉在木板上制成体长板。

塑料手套、纱布、小刷子、针线、蜡盘、天平、石蜡、发夹、标本瓶、玻璃板、针筒、凡士林、标签纸、海洋鱼类分类检索工具书、肥皂、记录册、铅笔等。

二、标本制作前的准备工作

1.标本处理前准备工作

①配制不同浓度的甲醛溶液（5％、10％、20％）。

②学习相关的鱼类形态结构特点，收集实验所需的各种大小鱼类资源。

2.标本处理

（1）清洗　对采集的鱼类标本，先用清水洗涤体表，将污物和黏液洗掉。刷洗时，应按鳞片排列方向进行刷洗，以免损伤鳞片。

（2）编号　将洗涤好的标本放在蜡盘中，根据采集顺序依次编号。每一个标本都要在胸鳍基部系一个带号的号牌。

（3）测量

①记录体色　每一种鱼都有自己特殊的体色，而且同一种鱼在不同环境中，其体色往往也有差异。鱼类的体色虽不是主要的鉴定特征，但对认识鱼有一定的意义，尤其是对中学生认识鱼类来说，鱼的体色更为直观和形象。因此，应趁海洋动物标本活着或新鲜时，将体色记录清楚。

②外部形态测量　为了快速、准确地测量鱼体各部分的长度，应该将鱼放在体长板上进行测量。鱼体外部形态的测量项目如下：

全长：从吻端或上颌前端至尾鳍末端的直线长度。

体长：有鳞类从吻端或上颌前端至尾柄正中最后一个鳞片的距离；无鳞类从吻部或上颌前端至最后一个脊椎骨末端的距离。

头长：从吻端或上颌前端至鳃盖骨后缘的距离。

吻长：从眼眶前缘至吻端的距离。

眼径：眼眶前缘至后缘的距离。

眼间：距从鱼体一边眼眶背缘至另一边眼眶背缘的宽度。

尾长：由肛门到最后一椎骨的距离。

尾柄高：尾柄部分最狭处的高度。

体重：整条鱼的重量。

③鱼体各部分性状计数

侧线鳞：沿侧线直行的鳞片数目，即从鳃孔上角的鳞片起至最后有侧线鳞片的鳞片数。

上列鳞：从背鳍的前一枚鳞斜数至接触到侧线的一片鳞为止的鳞片数。

下列鳞：臀鳍基部斜向前上方直至侧线的鳞片数。

鳃耙数：计算第一鳃弓外侧或内侧的鳃耙数。

上述各项观测结果应在观测过程中及时填写在鱼类野外采集记录表中（表3-1）。

三、制作浸制标本

（1）将洗净杀死的鱼放于蜡盘上，用发夹固定鱼鳍。

（2）用注射器将20％甲醛溶液注入鱼体内，然后将其放入10％甲醛溶液中固定，固定时应将标本的头部朝上，尾部朝下，尾和鳍要伸展好。固定时间需1d以上。

（3）待鱼体定型变硬后，将固定好的鱼放在蜡盘上，拿掉发夹，调整鱼鳍。

（4）选择适当大小的玻璃板，用针线将鱼固定在玻璃板上并调整好鱼体形态。

（5）选择适当大小的标本瓶，将固定好的玻璃板插入标本瓶中，倒入5％甲醛溶液进行保存。

（6）在标本瓶盖上涂1层凡士林后盖好，旋转一圈后，用石蜡封瓶，并贴上标签纸。

四、后阶段工作

查阅资料，给各种鱼类资源填写标签，进行成果展示（包括标本、照片和作专题知识讲座）。